实验试剂

生理盐水（或PBS）

弗氏完全佐剂（Freund’s complete adjuvant，FCA）

弗氏不完全佐剂（Freund’s incomplete adjuvant， FIA）

二甲苯，酒精棉，脱脂棉，2% NaN₃

实验设备

剪刀（剪兔毛用）一把、弯头眼科手术镊子（游离血管用）一把、直头眼科手术剪（剪血管用）一把，手术刀架，手术刀片，注射器（1ml、10ml，25ml）附针头，兔子固定架，灭菌三角烧瓶（200ml）或平皿（直径18cm）、弯头止血钳四把，直头止血钳两把，手术缝合线，塑料放血管，纱布等。

实验材料

1. 免疫原：蛋白或KLH偶联的多肽。每次免疫100-200μg免疫原。

2. 兔子的选择，兔子的重量应在四斤以上，两耳光滑，明显可见耳静、动脉，健康。

实验步骤

1. 免疫

用生理盐水稀释免疫原，然后与相应的佐剂进行1:1混合。抗原和佐剂完全混合形成稳定的乳剂，将该乳剂在兔子双肩周围的皮肤下进行皮下注射和后大腿进行肌肉注射。每个区域大约用1/4的免疫原。这样免疫原可以持久存在从而提高免疫应答。

注：

抗原注射以前需要收集一些正常血清，已备检测抗体时作为阴性对照。待兔子在新环境中稳定，大概需要四天左右时间，可以进行耳动脉取血。取血量约5ml足矣。

免疫用的抗原必须纯化，否则影响抗体的质量。抗原经FCA或FIA充分乳化后才能注射。将抗原液与佐剂等比例混合后，置于混合器上使之剧烈振荡使抗原充分乳化，乳化过程比较费时、费力，但若乳化不充分，会影响免疫的效果，振荡后，1000rpm离心一分钟，如水相和油相不分层即可注射。首次免疫用FCA，以后都用FIA。

免疫方法可采用背部多点注射法。即于家兔脊柱两旁选4-6点皮下注射，每点注0.1ml，间隔2周后再于上述部位选不同点注射（不要选择临近位点，否则溃疡愈合不好）。每次免疫的抗原量约100μg。免疫次数在四五次即可，抗原用量大可以减少次数。

2. 取血

免疫一周后，可以耳动脉取血检测抗体效价。因为起初几次免疫产生的抗体的效价比较低，头两次取血，够检测用即可。在三次免疫后，可以获得较高效价的抗体，每次取血量可以在40ml，不要取太多，否则会造成兔子贫血。

前几次取血用19号针头对兔子进行耳动脉取血，室温过夜析出血清。

最后一次取血可以采用颈动脉放血，具体操作如下：

   1) 家兔仰卧于兔架上固定头部，用纱布固定四肢。头部略放低以暴露颈部。剃毛并消毒皮肤。

   2) 沿颈部中线用手术刀切开皮肤约10cm，分离皮下结缔组织，直至暴露出气管两侧的胸锁乳突肌（小心操作，如碰到小血管出血，可用止血钳止血）。

   3) 用直头止血钳分离胸锁乳突肌与气管间的颈三角区疏松组织，暴露出颈总动脉后用弯头眼科镊使之游离，剥离神经和结缔组织。

   4) 于动脉下套入两根黑丝线，分别置于远心及近心端。结扎远心端的丝线。近心端的动脉用血管夹夹住。

   5) 用小拇指垫在血管下，用尖头眼科手术剪在两根丝线间的动脉璧上剪一小口（勿剪断），插入塑料放血管。再将近心端的丝线结扎固定于放血管上，以防放血管滑脱。

   6) 松开止血钳，使血液流入容器中。一般一只家兔可放血100-120ml。

3. 血清的分离

如果用三角瓶或平皿盛血，将器皿倾斜放置于37^oC烘箱2hr，转移到4^oC沉淀过夜，第二天早上用吸管吸取血清。如果用离心管收集，37^oC烘箱放置2hr，转移到4^oC沉淀过夜，第二天早上离心，10000RCF，10分钟。在血清中加入NaN₃至终浓度0.02%，分装后-20^oC保存。